Articles

European Poultry Science (EPS)

Arch.Ptak., 74 (3). Str. 158-163, 2010, ISSN 0003-9098. © Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart

akumulacja luteiny w jajku na karmienie niosek jednym Suplement luteina i lustro luteiny w osoczu u ludzi po zjedzeniu wzbogaconych jaj

S. H. Golzar Adabi1, ma Kamali2, J. Davoudi3, R. G. Cooper4 i A. Hajbabaei5
1Faculty of Agricultural, Department of Animal Science, Ankara University, Diskapi, Ankara, Turcja
2agricultural Research and Education Organization, Yaman Allay, Shahid Jamran St., Teheran, Iran
3Department of Veterinary, Islamic Azad University-Miyaneh Branch, Iran
4senior Lecturer in physiology, Pype Hayes, Birmingham, UK
5iran Ostrich Research International Co. (IORIC), Satarkan St., Tohid Sq., Teheran, Iran

Manuskript eingegangen am 26. Mai 2009, angenommen am 17. Juli 2009

podsumowanie

dwa eksperymenty zostały zaprojektowane w celu zbadania wpływu czterech dietetycznych poziomów luteiny na żółtko luteiny oraz stężenia zeaksantyny i luteiny w osoczu mężczyzn po spożyciu tych wzbogaconych jaj. W eksperymencie pierwszym, 80 pojedynczych mieszańców Leghorn White commercial zostało losowo rozmieszczonych w czterech grupach z czterema replikatami. Każdy replikat składał się z 5 kur na klatkę. Cztery poziomy luteiny (0, 250, 500, 750 mg/kg) podawano jako leczenie w całkowicie randomizowanym statystycznym projekcie. W eksperymencie drugim, czterech mężczyzn (na leczenie) o średnim wieku 60 lat, było karmionych jednym wzbogaconym jajkiem dziennie przez 4 tygodnie. Luteina przeniesiono w żółtko (p.

słowa kluczowe

człowiek, dieta, żółtko, matka polka, luteina, plazma

Cv

Przeróbka luteiny w jajku poprzez karmienia kur dodatkiem luteiny i poziomu luteiny w osoczu u ludzi po spożyciu ozdobionych jajek

badania wpływu czterech poziomów wpływy luteiny w paszy dla kur niosek na zawartość luteiny w żółtku i poziom zeaksantyny, a także poziom luteiny w osoczu u mężczyzn przeprowadzono dwa testy. W pierwszej próbie 80 białych hybryd leggorna zostało losowo przydzielonych do czterech zabiegów, z których każde powtórzono pięć razy. Każde powtórzenie (Klatka) obejmowało 5 kur niosek. Do czterech Diet paszowych dodano odpowiednio 0, 250, 500 i 750 mg luteiny/kg. W drugiej próbie czterech mężczyzn w średnim wieku 60 lat otrzymywało jajo wzbogacone luteiną codziennie przez cztery tygodnie na każde leczenie. Jaja uzyskano z próby 1 i zawierały luteinę o różnym poziomie w zależności od karmienia kur niosek. Die zulage von Lutein zum Futter führte zu signifikant höheren Dotterluteingehalten (P

Stichworte

Mensch, Legehenne, Nahrung, Dotter, Plasma, Luteina

wprowadzenie

luteina i zeaksantyna należą do dużej klasy pigmentów roślinnych zwanych kartenoidami. Ich polaryzacja jest większa niż wielu innych kartenoidów ze względu na obecność grup hydroksylowych na cyklicznej strukturze pierścienia. W przeciwieństwie do kartenoidów prowitaminy A (α – i β-karoten i kryptoksantyna), nie można ich przekształcić w witaminę A (Mares-Perlman i wsp., 2002). Luteina i zeaksantyna są obecne w wielu różnych owocach i warzywach i powodują żółty kolor w niektórych roślinach, takich jak kukurydza. Ich stężenie jest szczególnie wysokie w zielonych warzywach liściastych, takich jak szpinak, collards i jarmuż. Są one również obecne w niektórych produktach zwierzęcych, takich jak żółtka jaj ze względu na produkty roślinne spożywane przez ptaki (Mangels et al., 1993). Obecnie u ludzi spekuluje się, że spożywanie wyższych poziomów tych kartenoidów prowadzi do zwiększenia poziomu w tkankach ciała, szczególnie w oczach, i że może to przynieść korzyści zdrowotne poprzez obniżenie ryzyka chorób przewlekłych (Mares-Perlman et al., 2002).

luteina i zeaksantyna są głównymi karotenoidami w surowicy u ludzi, wraz z α – i β-karotenem i likopenem (Parker, 1989). Wykazano, że spożycie pokarmów bogatych w te karotenoidy wpływa pozytywnie na stężenie w surowicy (Hammond et al., 1997; Bone et al., 2000). Jednakże obserwowano indywidualne zmiany w odpowiedzi surowicy na zwiększone spożycie i mogą być spowodowane czynnikami takimi jak różne szybkości wchłaniania i wchłaniania tkanek.

metabolity luteiny i zeaksantyny zostały zidentyfikowane w ludzkiej krwi i tkankach (Hammond i wsp., 1997). Podaje się, że ester luteiny zapewnia pozytywne efekty w tkankach ludzkich(Wingerath et al., 1998). Jednak tylko wolna forma (nieestryfikowana) pojawia się w surowicy po spożyciu estrów ksantofilu w warunkach fizjologicznych (Breithaupt et al., 2003). Bowen et al. (2002) odnotowano wyższą biodostępność estru luteiny w porównaniu z postacią wolną, chociaż różnica ta nie była znacząca. Z drugiej strony Chung et al. (2004) spekulował, że ludzie mają bardzo skuteczny system hydrolizy estrów ksantofilu i że hydroliza estrów nie jest etapem ograniczającym absorpcji estru luteiny. Potwierdzili, że biodostępność luteiny z luteiny, suplementów estru luteiny i szpinaku nie różniła się.

rozpowszechniony izomer w ludzkiej siatkówce, mezozeaksantyna, może być metabolizowany z dietetycznej luteiny (Bone et al., 2000). Biologiczna wiarygodność, że luteina i zeaksantyna chronią przed rozwojem zaćmy i zwyrodnienia plamki żółtej, jest poparta faktem, że mają właściwości chemiczne, które mogą opóźniać mechanizmy patogenne, które są uważane za sprzyjające tym warunkom zwyrodnieniowym. Stres oksydacyjny jest wysoki w oku ze względu na intensywną ekspozycję na światło i wysokie tempo metabolizmu oksydacyjnego w siatkówce (Mares-Perlman et al., 2002). Young I Lowe (2001) dokonali przeglądu właściwości przeciwutleniających luteiny i zeaksantyny. Jednak Krinsky (2002) w oddzielnym badaniu cytował brak bezpośrednich dowodów na ochronę antyoksydacyjną tych karotenoidów in vivo. Innym potencjalnym modelem zwierzęcym, który został użyty do badania ochronnego wpływu luteiny i zeaksantyny na siatkówkę, był przepiórki. Siatkówka przepiórcza, podobnie jak plamka Prymasa, jest zdominowana przez fotoreceptory stożkowe i koncentraty luteiny i zeaksantyny. Wstępne badania wykazały odwrotną korelację między poziomem zeaksantyny w siatkówce przepiórczej a indukowaną światłem śmiercią komórek siatkówki (Dorey et al., 1997). Mniejsze ryzyko zwyrodnienia plamki żółtej jest związane ze spożywaniem źródeł żywności tych karotenoidów, z ogólnym poziomem luteiny i zeaksantyny w diecie lub z wyższym poziomem tych karotenoidów we krwi lub siatkówce (Mares-Perlman et al., 2002). Luteina i zeaksantyna mogą również odgrywać rolę w zdrowiu innych tkanek ciała. Chociaż związki te są w dużej mierze niezbadane, istnieje możliwość, że luteina, wraz z innymi karotenoidami, może chronić przed rakiem, chorobami układu krążenia i innymi schorzeniami, które mogą obejmować układ odpornościowy. Wpływ luteiny na układ odpornościowy może znajdować się w jego właściwościach przeciwutleniających. Koutzos et al. (2003) poinformował, że luteina jest obecna w komórkach odpornościowych kurcząt i że odkładanie się karotenoidów w tkankach odpornościowych rosnących piskląt ma wpływ na skład diety matki, co wskazuje, że dieta luteiny może być skutecznie przenoszona z kur hodowców na ich potomstwo. Luteina może zwiększać funkcję monocytów poprzez zwiększenie liczby cząsteczek powierzchniowych wyrażanych przez monocyty (Hughes et al., 2000). Luteina i β-karoten gaszą rodniki nadtlenowe i wykazują właściwości przeciwutleniające przeciwko uszkodzeniom oksydacyjnym in vitro (Sujak i in., 1999). Handelman i in. (1991) wykazał, że żółtko jaja jest wysoce dostępnym biologicznie źródłem luteiny i zeaksantyny. Korzyści z wprowadzenia tych karotenoidów do diety człowieka z żółtkiem jaja są równoważone przez potencjalne podniesienie poziomu cholesterolu LDL z dodanego cholesterolu w diecie.

żółtko jaja jest matrycą złożoną z strawnych lipidów, cholesterolu, triacyloglicerolu i fosfolipidu. Luteina i zeaksantyna są rozproszone w tej matrycy wraz z innymi rozpuszczalnymi w tłuszczach mikroelementami, takimi jak witaminy A, D i E. luteina i zeaksantyna w żółtku jaja mogą być wysoce biodostępne ze względu na ich związek z macierzą lipidową żółtka jaja (Schaeffer et al., 1988). Lai et al. (1996) stwierdził, że kolor żółtka jaj od kur karmionych takimi samymi poziomami wolnych i zestryfikowanych karotenoidów pieprzu czerwonego nie różni się znacząco, co wskazuje na prawie identyczną tendencję absorpcyjną karotenoidów, niezależnie od tego, czy są one wolne, czy pierwotnie zestryfikowane. Karotenoidy są od wielu lat stosowane w przemyśle drobiarskim jako środek pigmentacji jaj i mięsa (Leeson and Summers, 1997). Landrum And Bone (2001) zasugerował, że spożycie luteiny i zeaksantyny przez ludzi jest mniejsze niż 1 mg/d, co jest znacznie niższe niż obecnie testowane poziomy zapobiegawcze (Grando et al., 2003). Jaja zwykle zawierają od 0,3 do 0,5 mg wszystkich ksantofili, z nieco ponad połową występującą jako luteina (Steinberg et al., 2000). Dostępne są ograniczone informacje na temat skuteczności transportu różnych ksantofili do jaja i czynników wpływających na takie odkładanie. Na skuteczny transfer luteiny do jaj wpływa skład pokarmowy (Bedecarrats and Leeson, 2006). Jednak ostatnie doniesienia wskazują, że żółtko jaja jest wysoce biodostępnym źródłem luteiny, zwiększając stężenie luteiny w surowicy 110-350 nmol / L na każdy miligram połkniętej luteiny (Chung et al., 2004). Istnieje niewiele danych na temat toksyczności luteiny. Luteina i jej postać estrowa podawane doustnie w dawkach 4, 40 i 400 mg / kg masy ciała przez 4 tygodnie w badaniu toksyczności krótkoterminowej i 13 tygodni w badaniu toksyczności subchronicznej nie powodowały żadnej śmiertelności, zmiany masy ciała, wzorca spożycia pokarmu, masy narządów i nie wykazywały innych niepożądanych skutków ubocznych. Podawanie wolnej luteiny i jej postaci estrowej nie zmieniało czynności wątroby i nerek oraz nie powodowało żadnych zmian w parametrach hematologicznych i profilu lipidowym u szczurów z grupy Wistar. Analiza histopatologiczna narządów wspierała nietoksyczność luteiny i jej postaci estrowej(Harikumar et al., 2008).

w badaniu toksyczności rozwojowej luteiny u szczurów nie było dowodów na toksyczność w dawkach do 1 g/kg mc.na dobę (Światowa Organizacja Zdrowia, 2005). Przeprowadzono badania toksykologiczne na zwierzętach w celu ustalenia bezpieczeństwa luteiny jako składnika odżywczego (Alves-Rodrigues i Shao, 2004). W 4-tygodniowym pilotażowym badaniu toksyczności szczury Wistar karmione do 773 mg/kg mc. dziennie oczyszczoną krystaliczną luteiną (wraz ze wszystkimi składnikami stosowanymi do produkcji koralików włączanych do suplementów diety) nie wykazywały znaczących zmian klinicznych, hematologicznych, biochemicznych lub histopatologicznych sugerujących jakąkolwiek powiązaną toksyczność (Kruger i in., 2002).

(2006) zbadano zależność dawka-odpowiedź między doustną suplementacją luteiny a stężeniem luteiny w surowicy u osób w wieku 60 lat i starszych, z lub bez zwyrodnienia plamki żółtej związanego z wiekiem (AMD). Karmili osoby jedną z trzech dawek (2,5, 5 lub 10 mg) luteiny przez 6 miesięcy i obserwowali je przez 6 dodatkowych miesięcy po zaprzestaniu suplementacji luteiną. Pod koniec badania potwierdzili, że zwiększenie dawek suplementów luteiny znacznie zwiększyło stężenie luteiny i zeaksantyny w surowicy, a dawki do 10 mg były bezpiecznie podawane.

celem niniejszego badania było scharakteryzowanie profili kartenoidów w żółtku jaja (luteina i zeaksantyna) oraz stężenia luteiny w osoczu u zdrowych dorosłych mężczyzn po spożyciu jaj wzbogaconych luteiną.

materiały i metody

w celu zbadania wpływu dietetycznej luteiny na stężenie luteiny i zeaksantyny w jajku, badania te przeprowadzono w całkowicie randomizowanym projekcie, składającym się z czterech zabiegów w czterech replikatach. Całkowita liczba kur niosek użytych w tym eksperymencie wynosiła osiemdziesiąt komercyjnych mieszańców pojedynczego grzebienia białego Leghorna (5 kur na klatkę). Eksperyment został przeprowadzony zgodnie z etycznymi komisjami ds. dobrostanu zwierząt irańskiego ministerstwa rolnictwa. Dla warstw w wieku 32-37 tygodni (od sierpnia 2008 r.do września 2008 r.) opracowano dietę opartą na mączce kukurydzianej i sojowej, a wszystkie diety przygotowano w formie zacieru (Tabela 1). Przed rozpoczęciem eksperymentu ptaki karmiono dietą kontrolną (Tabela 1), a na początku badania podawano cztery poziomy luteiny (0, 250, 500, 750 mg/kg; Leeson and Caston, 2004; Bedecarrats and Leeson, 2006) dostarczane przez firmę DSM® (Stambuł, Turcja; FloraGlo 10% luteiny, powszechnie stosowanej w żywności dla ludzi). Stężenia luteiny i zeaksantyny w paszy analizowano w diecie metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC) według metod Webera (1988) i Leesona i wsp. (2007) (Tabela 1). Dzienna ewidencja produkcji jaj. Pod koniec każdego tygodnia (po tygodniu adaptacji) zbierano wszystkie jaja do oceny barwy żółtkowej za pomocą wachlarza barwy żółtkowej DSM (wcześniej zwanego wachlarzem barwy żółtkowej Roche ’ a) od 1 do 15. Pod koniec badania zebrano dwa jaja z każdego replikatu w celu oznaczenia zawartości luteiny i zeaksantyny metodą HPLC, jak wcześniej opisali Leeson and Caston (2004). Krzywą kalibracyjną przygotowano przy użyciu standardów luteiny i zeaksantyny (Leeson and Caston, 2004).

Tabela 1. Skład i zawartość składników odżywczych w pilotażowym diecie (%)

Skład i zawartość składników odżywczych w pilotażowym diecie (%)

Składnik (%)

Kukurydza

Mąka sojowa

Pszenica

mączka Rybna

Sól

Di fosforan wapnia

Min + wit. premix1

Dl-methionine

Oyster shell

Calculated analysis

ME (kcal/kg)

Crude protein

Lysine

Methionine

Methionine + cystin

Ca

P (nonphytate)

Linoleic acid

Na

Lutein2 (mg/kg)

7 ± 1

Zeaxanthin2 (mg/kg)

5 ± 1

1 Supplied (per kilogram of premix): vitamin A, 6,000,000 IU; cholecalciferol, 1,500,000 IU; vitamin E, 15,000 mg; riboflavin, 3,000 mg; pantothenic acid, 7,000 mg; nicotinic acid, 25,000 mg; kwas foliowy, 500 mg; i witamina B12, 15,000 µg; Mn, 120,000 mg; Zn, 80,000 mg; Fe, 90,000 mg; Cu, 15,000 mg; I, 1,600 mg; Se, 500 mg; i Co, 600 mg. 2 oznaczona koncentracja.

wpływ suplementacji jajkami wzbogaconymi luteiną zbadano U 4 mężczyzn w przeliczeniu na zabieg w średnim wieku 60 lat (Przedział: 56-64 lata). Jaja były produkowane przez kury karmione dietami o różnej zawartości luteiny, jak opisano powyżej (0, 250, 500, 750 mg / kg). Ścieżka została wykonana zgodnie z Iran Committee of Bioethics, National Committee for Ethics in Science and Technology. Badani byli niepalącymi i nie przyjmowali żadnych leków. Z badania wykluczono osoby z czynną chorobą jelita cienkiego lub resekcją w wywiadzie, zanikowym zapaleniem błony śluzowej żołądka, insuliną wymagającą cukrzycy, alkoholizmem, chorobą trzustki lub zaburzeniami krzepnięcia. Mężczyźni otrzymywali jedno jajko w codziennej diecie przez 4 tygodnie, a podczas eksperymentu byli karmieni tą samą dietą. Próbki krwi pobrano 1 tydzień przed leczeniem (tydzień -1). Ponieważ jakościowe i ilościowe profile karotenoidów, ich metabolitów, witamin A i E w surowicach każdego pacjenta w dwóch punktach czasowych były prawie identyczne, dane z tygodnia -1 wykorzystano jako pomiary początkowe (Khachik i wsp., 2006). Ponadto próbki krwi pobierano pod koniec tego okresu, a poranne próbki krwi pobierano po 8-godzinnym poście. Luteinę w osoczu analizowano za pomocą procedury dostosowanej do metody Handelmana i wsp. (1999).

Analiza statystyczna

dane analizowano metodą całkowicie randomizowanego projektowania z zastosowaniem czterech zabiegów każda zastosowana do tej samej liczby jednostek i czterech replikacji na leczenie. Program SAS (SAS Institute, 1996, SAS Institute Inc., Cary, NC, USA) wykorzystano do analizy danych. Środki zmiennych porównano za pomocą testu wielozakresowego Duncana (Duncan, 1955). Badanie przeprowadzono przy 95 i 99% przedziałach ufności (CIs), a wyniki p

i omówienie

danych dotyczących barwy żółtka, a także luteiny i zeaksantyny żółtka jaja przedstawiono odpowiednio na fig. Wyniki wzbogacania żółtka jaja o różne poziomy luteiny u mężczyzn, którzy otrzymywali jedno jajko dziennie, przedstawiono na fig. 2.

Bild

Rysunek 1. Wpływ dietetycznej luteiny na barwę żółtka jaja (czyli w czasie bez wspólnej litery różnią się znacznie; P

wpływ zawartości luteiny w wyściółce na kolor żółtka (średnie wartości w tym samym czasie z różnymi literami znacznie się różnią; P

Tabela 2. Zawartość luteiny i zeaksantyny w żółtku jaja (mg/57 g masy jaja)

zawartość luteiny i zeaksantyny w żółtku (mg / 57 g masy jaja)

zawartość luteiny i zeaksantyny w żółtku (mg / 57 g masy jaja)

luteina dietetyczna (mg / kg)

Luteina

zeaksantyna

luteina + zeaksantyna

0.12c

±

0.14a

±

0.26c

±

1.35b

±

0.12b

±

1.47b

±

1.41ab

±

0.11c

±

1.52ab

±

1.43ab

±

0.11c

±

1.54ab

±

Znaczenie

**

**

**

A, b, c średnie wartości w tej samej kolumnie z różnymi literami górnego indeksu były znacząco różne. ** (p

Bild

Rysunek 2. Zmiany stężenia luteiny w osoczu po spożyciu suplementacji jaj o różnym poziomie luteiny u zdrowych dorosłych mężczyzn (p

Veränderung des Plasma-Luteinspiegels bei gesunden, erwachsenen Männern nach dem Verzehr von Eiern mit unterschiedlichen Luteingehalten (P

po tygodniu karmienia z suplementacji luteiny, luteiny i zeaksantyny w postaci żółtko jaja znacznie wzrosło (P tabela 2). Najbardziej zauważalne wzbogacenie nastąpiło dla 250 mg/kg luteiny, a najwyższy poziom żółtka jaj luteiny i zeaksantyny osiągnięto przy 750 mg/kg luteiny. Nie zaobserwowano istotnych różnic w zawartości luteiny żółtkowej pomiędzy suplementacją luteiny 500 i 750 mg/kg do diety.

po 7 dniach suplementacji barwa żółtka jaja wzrosła z 5,5 do 13,7 w skali DSM. Barwnik żółtka w grupach karmionych luteiną w dawce 250 mg/kg podczas szlaku zwiększył się, ale barwnik żółtka jaja nie został w znacznym stopniu zmieniony przez suplementy luteiny w diecie powyżej 500 mg/kg (P rycina 1). Występowanie luteiny w żółtku jaja jest zgodne z obserwacjami Leesona i Castona (2004), którzy donieśli, że dodanie luteiny do diety warstw spowodowało znaczące (P Toyoda et al. (2002) wykazały w swoich badaniach nad przepiórkami, że średnie stężenie luteiny i zeaksantyny w surowicy kobiet i wątrobie przekraczało stężenie u mężczyzn od 3 do 10 razy, ale średnie stężenie luteiny i zeaksantyny w żeńskiej siatkówce i tłuszczu było co najwyżej dwa i cztery razy wyższe niż u mężczyzn, odpowiednio. Różnica ta jest wyjaśniona przez osadzanie luteiny i zeaksantyny w jajach ze względu na fakt, że samice układały się w sposób ciągły. Breithaupt et al. (2003) wskazał, że po karmieniu komercyjnych kur niosek wolną luteiną uzupełnioną przez tydzień, zmienił się profil kartenoidów osocza.

luteina i zeaksantyna, naturalne ksantofile nie syntetyzowane przez ludzkie ciało, zostały zbadane pod kątem ich zastosowania w promowaniu zdrowia wizualnego (Zhao and Sweet, 2008). Luteina w osoczu była wysoka po spożyciu jaj uzupełnionych luteiną 500 i 750 mg/kg (p Chung i wsp. (2004), w którym zaobserwowano większą odpowiedź luteiny w surowicy po spożyciu jaj w porównaniu z suplementami i szpinakiem. Zhao and Sweet (2008) poinformowali, że zwiększone spożycie luteiny i zeaksantyny w diecie spowodowało zwiększenie poziomów w osoczu, które były pozytywnie i znacząco związane z gęstością optyczną pigmentu plamki żółtej. Ograniczone dane sugerują, że suplementacja może również poprawić funkcje wzrokowe. Optymalna dawka luteiny i zeaksantyny w zapobieganiu lub leczeniu zwyrodnienia plamki związanego z wiekiem (AMD) nie została jeszcze określona. Ata i in. (2009) na szlaku z ludźmi potwierdził, że jajko jest dobrym nośnikiem dla wchłaniania karotenoidów w diecie i że zwiększona dieta luteiny koreluje z gęstością pigmentu plamki żółtej, a nie z odkładaniem karotenoidów w skórze. W żółtku jaja luteina znajduje się w strawnej matrycy lipidowej, która składa się z cholesterolu, triacyloglicerolu i fosfolipidów. Zawartość cholesterolu w żółtku jaja może zwiększać biodostępność luteiny (Cotteril et al., 1977). Wykazano, że spożycie pokarmu w tych kartenoidach wpływa pozytywnie na stężenie w surowicy (Hammond i wsp ., 1997). Tang i in. (1995) stwierdził, że długotrwała suplementacja kantaksantyną u fretek zmniejsza luteinę-zeaksantynę w tłuszczu, podczas gdy dane z Grolier et al. (1997) wskazał, że kantaksantyna ingeruje w wchłanianie lub przetwarzanie β – karotenu. Kiedy Micozzi et al. (1992) karmiony suplementem brokułów dostarczającym 6 mg luteiny dziennie, wartości luteiny w osoczu powróciły do wartości wyjściowych 4 tygodnie po zaprzestaniu suplementacji brokułów. Zgłaszane stężenie luteiny i zeaksantyny jest często najwyższe w tkance plamki żółtej, udział całkowitych karotenoidów w tkance składającej się z luteiny i zeaksantyny jest również różny(Chung et al., 2004). Poziom zmienności u poszczególnych osób może odzwierciedlać zarówno dietę, jak i czynniki genetyczne. Oznacza to, że dieta wpłynie na stężenie luteiny i zeaksantyny, co jest poparte kilkoma badaniami, które zgłosiły wzrost gęstości pigmentu plamki żółtej przy karmieniu pokarmów (Hammond et al., 1997) lub suplementy (Landrum et al., 1997).

obecne badanie wykazało, że żółtko jaja może stanowić wysoce biodostępne źródło luteiny i zeaksantyny, a poprzez uzupełnienie diety luteiną można ją zwiększyć w żółtku jaja. Wyniki te wskazują, że u ludzi dorosłych, spożywających jedno jajko dziennie przez cztery tygodnie, stężenie luteiny w osoczu znacznie wzrasta.

podziękowania

autorzy są wdzięczni Ostad Aali Nasab Hospital za doskonałą współpracę, a specjalne podziękowania dla Necmettin Ceylan, profesora Wydziału Nauk o zwierzętach, Ankara University, Turcja za wiele pomocnych dyskusji.

Alves-Rodrigues, A., A. Shao, 2004: the science behind luteina. Toxicol. Lett. 150, 57-83.

Ata, S. M., J. Barona, J. Ratliff, J. E. Kim, T. Al-Sarraj, J. Oleite, J. S. Volek, M. L. Fernandez, 2009: regularne jaja i jaja wzbogacone luteiną zwiększały gęstość pigmentu plamki żółtej bez zmiany lipidów w osoczu. J. Feder. American Soci. Eksperyment. Biol. 23 722,10 zł

Bedecarrats, G. Y., S. Leeson, 2006: dietetyczna luteina wpływa na odpowiedź immunologiczną u kur niosek. J. Appl. Poult. Res. 15, 183-189.

Bone, R. A., J. T. Landrum, Z. Dixon, Y. Chen, C. M. Lierena, 2000: luteina i zeaksantyna w oczach, surowica i dieta ludzi. Exp. Eye Res. 71 (3), 239-245.

Bowen, P. E., S. M. Herbst-Espinosa, E. A. Hussain, M. Stacewicz-Sapuntzakis, 2002: Estryfikacja nie upośledza biodostępności luteiny u ludzi. J. Nutr. 132, 3668-3673.

Breithaupt, D. E., P. Weller, M. A. Grashorn, 2003: Quantification of karotenoids in chicken plasma after feeding free or estrified luteina and capsanthin using high-performance liquid chromatography and liquid chromatography-mass spectrometry analysis. Poult. Sci. 82, 395-401.

Chung, Hy, HM Rasmussen, E. Johnson, 2004: biodostępność luteiny jest wyższa od jaj wzbogaconych luteiną niż od suplementów i szpinaku u mężczyzn. J. Nutr. 134, 1887-1893.

Cotteril, O. J., W. W. Marion, V. Naber, 1977: a nutrient re-evaluation of shell eggs. Poult. Sci. 56, 1927-1934.

Dorey, K., Y. Toyoda, L. Thomsom, K. M. Garnett, M. Sapunzakis, N. Craft, C. Nichols, K. Cheng, 1997: Light-induced photoreceptor apoptosis is correlated with dietary and levels of 3R,3’R-zeaxanthin. Investig. Ophthamol. Vis. Sci. (suppl.). 38, S355 (Abstract).

Duncan, D.B., 1955: Multiple range and multiple F tests. Biometrics. 11, 1-42.

Grolier, P., C. Duszka, P. Borel, 1997: In vitro and in vivo inhibition of β- carotene dioxygenase activity by canthaxanthin in rat intestine. Arch. Biochem. Biophys. 348, 233-238.

Grando, F., B. Olmedilla, I. Blanco, 2003: Znaczenie odżywcze i kliniczne luteiny w zdrowiu człowieka. Br. J. Nutr. 90, 487-502.

Hammond, B. R., E. J. Johnson, R. M. Russell, N. I. Krinsky, K. J. Yeum, R. B. Edwards, D. M. Snodderly, 1997: Dietary modification of human macular pigment density. Inwestuj. Ophthamol. Vis. Sci. 38(9), 1795-1801.

Handelman, G. J., B. Shen, N. I. Krinsky, 1991: High-resolution analysis of karotenoids in human plasma by high-performance liquid chromatography. Metody Enzymol. 213, 336-346.

Handelman, G. J., Z. D. Nightingale, A. H. Lichtenstein, E. J. Schaefer, J. B. Blumberg, 1999: Stężenie luteiny i zeaksantyny w osoczu po suplementacji diety jajkiem. Am. J. Clin. Nutr. 70, 247-251.

Harikumar, K. B., C. V. Nimata, K. C. Preethi, R. Kuttan, 2008: profil toksyczności luteiny i estru luteiny wyizolowanego z kwiatów nagietka (Tagetes erecta). International J. Toxicol. 27 (1), 1-9.

Hughes, D. A., A. J. A. Wright, P. M. Finglas, A. C. J. Polley, A. L. Bailey, S. B. Astley, S. Southon, 2000: wpływ suplementacji likopenem i luteiną na ekspresję funkcjonalnie powiązanych cząsteczek powierzchniowych na monocytach krwi od zdrowych niepalących mężczyzn. J. Zarazić. Dis. 182, S11-S15.

Khachik, F., F. F. de Moura, E. Y. Chew, L. W. Douglass, F. L. Ferris, J. Kim, D. J. S. Thompson, 2006: wpływ suplementacji luteiny i zeaksantyny na metabolity tych karotenoidów w surowicy osób w wieku 60 lat lub starszych. Inwestuj. Opthalmol. Visual Sci. 47(12), 5235-5242.

Koutzos, E. A., C. C. Calvert, K. C. Klasing, 2003: the effect of an acute phase response on tissue carotenoid levels of growing Chicken (Gallus gallus domesticus). Comp. Biochem, Physiol. 135, 635-646.

Krinsky, N. I., 2002: Możliwe biologiczne mechanizmy ochronne ksantofili. J. Nutr. 132, 540s-542s.

Kruger, C. L., M. Murphy, Z. Defreitas, F. Pfannkuch, J. Heimbach, 2002: an innovative approach to the determination of safety for a dietary ingredient derived from a new source: case study using a crystalline lutein product. Chem.Żywności Toxicol. 40, 1535-1549.

Lai, S. M., I. J. Gray, C. J. Flegal, T. Cooper, 1996: Deposition of carotenoids in eggs from hens Feed diets containing saponified and unsaponified oleoresin paprika. J. Sci. Food Agric. 72, 166-170.

Landrum, J. T., R.A. Bone, H. Joa, MD Kilburn, L. L. Moore, K. E. Sprague, 1997: jednoroczne badanie pigmentu plamki żółtej: efekt 140 dni suplementu luteiny. Exp. Eye Res. 65 (1), 57-62.

Landrum, J. T., R. A. Bone, 2001: luteina, zeaksantyna i pigment plamki żółtej. Arch. Biochem. Biophys. 385 (1), 28-40.

Leeson, S., J. D. Summers, 1997: Commercial poultry nutrition. Publ. Univ. Książki, Guelph.

Leeson, S., L. Caston, 2004: Enrichment of eggs with lutein. Poult. Sci. 83, 1709-1712.

Leeson, S., L. Caston, H. Namkung, 2007: Wpływ diety luteiny i lnu na wydajność, skład jaj i stan wątroby kur niosek. Może. J. Anim. Sci. 87, 365-372.

Mares-Perlman, J. A., A. E. Millen, T. L. Ficek, S. E. Hankinson, 2002: the body of evidence to support a protective role for luteina and zeaksantyna in delaying chronic disease. J. Nutr. 132, 518-524.

Mangels, A. R., J. M. Holden, G. R. Beecher, M. R. Forman, E. Lanza, 1993: carotenoid content of fruits and vegetables: an evaluation of analytic data. J. Am. Dieta. Assoc. 93 (3), 284-296.

Micozzi, M. S., E. D. Brown, B. K. Edwards, J. G. Bieri, P.R. Taylor, F. Khachik, G. R. Beecher, J. C. Smith Jr., 1992: reakcja karotenoidów w osoczu na przewlekłe spożycie wybranych pokarmów i suplementów β-karotenowych u mężczyzn. Am. J. Clin. Nutr. 55 (6), 1120-1125.

Parker, R. S., 1989: karotenoidy w ludzkiej krwi i tkankach. J. Nutr. 119 (1), 101-104.

Rosenthal, J. M., J. Kim, F. Deonasterio, D. J. Thompson, R. A. Bone, J. T. Labdrum, F. F. Demoura, F. Khachik, H. Chen, R. L. Schleicher, F. L. Ferris III, E. Y. Chew, 2006: Badanie dawki suplementacji luteiny u osób w wieku 60 lat lub starszych. Inwestuj. Ophthalmol. Vis Sci. 47, 5227-5233.

SAS Institute, 1996: SAS/STAT® user ’ s guide, wydanie 6.03 edition. SAS institute Sp. z o. o., Cary, NC.

Schaeffer, J. L., J. K. Tyczkowski, C. R. Parkhurst, P. B. Hamilton, 1988: Carotenoid composition of serum and egg yolks of kur Feed diets variable in karotenoid composition. Poult. Sci. 67, 608-614.

Steinberg, W., M. A. Grashorn, A. M. Kluenter, J. Schierle, 2000: Comparative pigmentation efficiency of two products containing or APO-ester or tagetes extracts on egg yolks and liquid eggs. Arch. Geflugelk. 64, 180-187.

Sujak, A., J. Gabrielska, W. Grudziński, R. Borc, P. Mazurek, W. I. Gruszecki, 1999: luteina i zeaksantyna jako Ochronniki błon lipidowych przed uszkodzeniami oksydacyjnymi: aspekty strukturalne. Arch. Biochem. Biophys. 371 (2), 301-307.

Tang, G., M. C. Blanco, J. G. Fox, R. M. Russell, 1995: suplementacja fretek kantaksantyną wpływa na rozkład tkankowy kantaksantyny, innych karotenoidów, witaminy A i witaminy E. J. Nutr. 125 (7), 1945-1951.

Toyoda, Y., L. R. Thomson, A. Langner, N. E. Craft, K. M. Garnett, C. R. Nichols, K. M. Cheng, C. K. Dorey, 2002: Wpływ diety zeaksantyny na rozkład tkankowy zeaksantyny i luteiny w przepiórkach. Inwestuj. Ophthalmol. Vis. Sci. 43 (4), 1210-1221.

Weber, S., 1988: oznaczanie ksantofili, luteiny i zeaksantyny w paszach pełnoporcjowych i różnych mieszankach ksantofili z HPLC. Strony 83-85 w metodach analitycznych witamin i karotenoidów w paszach. H. E. Keller, ed. Roche Publ., Bazylea, Szwajcaria.

Wingerath, T., H. Sies, W. Stahl, 1998: Xanthophyll esters in human skin. Arch. Biochem. Biophys. 355, 271-274.

Światowa Organizacja Zdrowia, 2005: Ocena niektórych dodatków do żywności. Światowy Organ Zdrowia. Tech. REP.Ser. 928, 1-156.

Young, A. J., G. M. Lowe, 2001: właściwości przeciwutleniające i prooksydacyjne karotenoidów. Arch. Biochem. Biophys. 385 (1), 20-27.

Zhao, L., B. V. Sweet, 2008: luteina i zeaksantyna na zwyrodnienie plamki żółtej. American J. Pharm. 65 (13), 1232-1238.